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一 蛋白质印迹(Western Blot, WB)

     又称为免疫印迹(Immunoblot),是利用SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)将样品中分子量大小不同的蛋白分开,然后通过电转移的方法将凝胶中的蛋白转移到固相膜上,再利用抗原、抗体的特异性结合反应,特殊的抗体标记技术以及相应的检测方法,进而对目的蛋白进行定性、相对定量检测的技术。

二 Western Blot用途

   检测目标蛋白有无、大小
   检测处理后目标蛋白的表达量变化
   检测目标蛋白在不同的细胞或组织中的表达量差异

三 Western Blot实验流程

四 样本制备

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   Western Blot技术讲解——样本制备篇

五 电泳分离

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   Western Blot技术讲解---电泳分离篇

六 转膜

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   Western Blot技术讲解---转膜篇

七 封闭

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   Western Blot技术讲解——封闭篇

八 抗体孵育

1、原理:

   目的蛋白印迹在膜上,经过封闭之后,印迹目的蛋白与一个或多个抗体孵育。第一个抗体(一抗)与目的蛋白结合,而第二个抗体(二抗)与第一个抗体结合,二抗本身结合有酶或染料,可用来指示蛋白的位置。不过有些一抗也具有直接标记的功能,但使用标记二抗有明显优势。首先不止一个二抗分子能与单个一抗分子结合,可以放大信号;其次,标记的二抗可用于大量不同特异性的一抗,因而无需标记多个一抗。

2、抗体选择:

   在对于任何一种目的蛋白,都有不止一种有效抗体。为缩小选择的范围,我们通常要考虑以下几个方面:

   文献引用:根据官网了解该抗体发表文献的数量,如果发现该靶点的抗体有多个货号,那么尽可能选择发表文献较多的货号。

   反应性:根据自己实验动物的种属性选择合适的抗体,比如,实验动物是小鼠,那么一抗需要选择抗小鼠。

   实验应用:根据自己实验类型选择厂家验证过的抗体,尽可能选择的抗体能够满足多种类型实验,保证抗体的使用价值。

   抗体偶联物:标签结合在抗体上使抗体的结合可见,选择标签抗体以检测方法的为依据进行选择。一般推荐使用HRP标记二抗,不建议使用碱性磷酸酶(AP)标记二抗,因其不够灵敏。在二抗种类的选择上,二抗应来源于产生一抗的物种。

3、抗体稀释:

   按照抗体说明书建议的稀释倍数进行稀释使用,有时一抗和二抗的最佳浓度也取决于检测试剂的灵敏度。一般来说,高倍稀释一抗可减少非特异性信号,高倍稀释酶标二抗可最大限度降低整体的高背景。

4、抗体孵育:

   一抗的孵育时间一般是室温2个小时或4℃过夜,主要取决于抗体与蛋白的亲和性和蛋白的丰度。一般建议使用较高的抗体稀释倍数结合较长的时间孵育,以保证特异性结合。若孵育时间较长应在4℃过夜进行。

   二抗孵育在一抗结束后,TBST洗膜5min以去除残留一抗。孵育一般在室温下1-2h。

5、清洗:

   清洗转印膜可从膜上去除未结合的抗体或多余封闭剂,它们会导致高背景和检测不佳。常用清洗缓冲液是含有吐温-20的PBS或TBS稀释液。如前所述,高浓度的去污剂可能会使目的蛋白从膜上洗脱。而对于高度纯化抗体,往往使用不含去污剂的缓冲液进行清洗。

   清洗次数和时间根据具体实验来确定,清洗过少会产生过高背景;过度清洗会洗脱目的蛋白或降低信号。建议清洗3-5次,每次5min。

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